Диагностическая значимость лимфоцитарно-моноцитарного индекса при контрактуре Дюпюитрена

Введение. Данные мировой литературы свидетельствуют о вовлечённости клеток воспалительного ряда в патогенез ладонного фасциального фиброматоза, однако данные о возможных изменениях лейкоцитарных индексов периферической крови у пациентов с контрактурой Дюпюитрена (КД) в сравнении со здоровыми людьми отсутствуют.

Цель. Оценка диагностической значимости нейтрофильно-лимфоцитарного (N/L) и лимфоцитарно-моноцитарного (L/M) индексов периферической крови у пациентов c КД.

Материалы и методы. Ретроспективно изучены 162 истории болезни пациентов, поступивших на оперативное лечение. Для сравнения результатов анализов периферической крови с нормой использовали анонимизированные лейкоцитограммы 110 условно здоровых лиц (контроль).

Результаты. В группе здоровых людей и у пациентов с КД выражен половой диморфизм абсолютного содержания нейтрофилов. У мужчин с КД установлено статистически значимое снижение абсолютного содержания лимфоцитов (p = 0,05), а у женщин – достоверное повышение абсолютного содержания моноцитов (p = 0,00) по сравнению с контролем, при этом у больных с КД отсутствует связанная с полом разница этих показателей, характерная для здоровых людей. N/L повышен у мужчин с КД по сравнению с контролем (p = 0,05) и подгруппой женщин с КД (p = 0,01), но по результатам ROC- анализа N/L оказался диагностически бесполезным. Для модели «L/M – степень контрактуры» AUC 0,945, CI 0,918-0,970, p = 0, Se 90,12, Sp 93,21; оптимальный порог L/M 3,102. У пациентов с низким L/M (≤ 3,0) частота поражения обеих кистей и частота контрактур III-IV степени больше на 27,75 % (p = 0,02) и 27,15 % (p = 0,03) соответственно, чем в подгруппе с высоким L/M.

Обсуждение. Разнонаправленность изменений содержания лимфоцитов и моноцитов у мужчин и женщин согласуется с известными из литературы сведениями о дуальных гендер- специфичных путях регуляции иммунной системы у здоровых людей и у пациентов с различными заболеваниями.

Заключение. По данным исследованной выборки пациентов, лимфоцитарно-моноцитарный индекс является полезным дополнительным лабораторным показателем для выделения группы риска тяжёлого течения фасциального фиброматоза, который без дополнительных затрат может использоваться в клинической практике наряду с известными критериями для выделения группы риска прогрессирования контрактуры Дюпюитрена.

1. Meyerding HW, Black JR, Broders AC. The etiology and pathology of Dupuytren’s contracture. Surg Gynecol Obstet. 1941;72(3):582-590.

2. Vi L, Gan BS, O'Gorman DB. The potential roles of cell migration and extra-cellular matrix interactions in Dupuytren's disease progression and recurrence. Med Hypotheses. 2010;74(3):510-512. doi: 10.1016/j.mehy.2009.10.009

3. Salari N, Heydari M, Hassanabadi M, et al. The worldwide prevalence of the Dupuytren disease: a comprehensive systematic review and metaanalysis. J Orthop Surg Res. 2020;15(1):495. doi: 10.1186/s13018-020-01999-7

4. Murphey MD, Fairbairn KJ, Parman LM, et al. From the archives of the AFIP. Musculoskeletal angiomatous lesions: radiologic-pathologic correlation. Radiographics. 1995;15(4):893-917. doi: 10.1148/radiographics

5. Kraus R, Alzen G, Dreyer T, et al. Morbus dupuytren im kindesalter - fallbericht und literaturrecherche [Dupuytren's disease in children - case report and literature review]. Handchir Mikrochir Plast Chir. 2012;44(3):175-7. (In German) doi: 10.1055/s-0032-1312655

6. Nordenskjöld J, Englund M, Zhou C, Atroshi I. Prevalence and incidence of doctor-diagnosed Dupuytren's disease: a population-based study. J Hand Surg Eur Vol. 2017;42(7):673-677. doi: 10.1177/1753193416687914

7. Diep GK, Agel J, Adams JE. Prevalence of palmar fibromatosis with and without contracture in asymptomatic patients. J Plast Surg Hand Surg. 2015;49(4):247-250. doi: 10.3109/2000656X.2015.1034724

8. Ball C, Izadi D, Verjee LS, et al. Systematic review of non-surgical treatments for early dupuytren's disease. BMC Musculoskelet Disord. 2016;17(1):345. doi: 10.1186/s12891-016-1200-y

9. Denkler KA, Park KM, Alser O. Treatment Options for Dupuytren's Disease: Tips and Tricks. Plast Reconstr Surg Glob Open. 2022;10(1):e4046. doi: 10.1097/GOX.0000000000004046

10. Müller-Seubert W, Cai A, Arkudas A, et al. A Personalized Approach to Treat Advanced Stage Severely Contracted Joints in Dupuytren's Disease with a Unique Skeletal Distraction Device-Utilizing Modern Imaging Tools to Enhance Safety for the Patient. J Pers Med. 2022;12(3):378. doi: 10.3390/jpm12030378

11. Dutta A, Jayasinghe G, Deore S, et al. Dupuytren's Contracture - Current Concepts. J Clin Orthop Trauma. 2020;11(4):590-596. doi: 10.1016/j.jcot.2020.03.026

12. Satish L, Gallo PH, Baratz ME, et al. Reversal of TGF-β1 stimulation of α-smooth muscle actin and extracellular matrix components by cyclic AMP in Dupuytren's-derived fibroblasts. BMC Musculoskelet Disord. 2011;12:113. doi: 10.1186/1471-2474-12-113

13. van Beuge MM, Ten Dam EJ, Werker PM, Bank RA. Matrix and cell phenotype differences in Dupuytren's disease. Fibrogenesis Tissue Repair. 2016;9:9. doi: 10.1186/s13069-016-0046-0

14. Mayerl C, Del Frari B, Parson W, et al. Characterisation of the inflammatory response in Dupuytren's disease. J Plast Surg Hand Surg. 2016;50(3):171- 9. doi: 10.3109/2000656X.2016.1140054

15. Щудло НА, Варсегова ТН, Ступина ТА, Щудло ММ. Типы и стадии сосудистого ремоделирования при контрактуре Дюпюитрена (анализ 506 артерий в операционном материале 111 пациентов). Гений ортопедии. 2020;26(2):179-184. doi: 10.18019/1028-4427-2020-26-2-179-184

16. Щудло Н.А., Костин В.В. Патогенез нейропатии при контрактуре Дюпюитрена. Гений ортопедии. 2019;25(1):58-64. doi: 10.18019/1028-4427-2019-25-1-58-64

17. Andrew JG, Andrew SM, Ash A, Turner B. An investigation into the role of inflammatory cells in Dupuytren's disease. J Hand Surg Br. 1991;16(3):267-271. doi: 10.1016/0266-7681(91)90051-o

18. Gudmundsson KG, Arngrímsson R, Arinbjarnarson S, et al. T-and B-lymphocyte subsets in patients with Dupuytren's disease. Correlations with disease severity. J Hand Surg Br. 1998;23(6):724-7. doi: 10.1016/s0266-7681(98)80083-1

19. Garcia Rojo E, García Gómez B, Santos-Pérez de la Blanca R, et al. Role of neutrophil-to-lymphocyte and platelet-to-lymphocyte ratios in Peyronie's disease: a new diagnostic approach to predict the stage of the disease? Asian J Androl. 2021;23(3):325-329. doi: 10.4103/aja.aja_74_20

20. Chen Y, Zhang Y, Zhao G, et al. Difference in Leukocyte Composition between Women before and after Menopausal Age, and Distinct Sexual Dimorphism. PLoS One. 2016;11(9):e0162953. doi: 10.1371/journal.pone.0162953

21. Ruettermann M, Hermann RM, Khatib-Chahidi K, Werker PMN. Dupuytren's Disease-Etiology and Treatment. Dtsch Arztebl Int. 2021;118(46):781- 788. doi: 10.3238/arztebl.m2021.0325

22. Hueston J.T. Dupuytren diathesis. In: McFarlane RM, McGrouther DA, Flint M, eds. Dupuytren’s Disease Biology and Treatment. Edinburgh: Churchill Livingstone; 1990:246-252.

23. Abe Y, Rokkaku T, Ofuchi S, et al. An objective method to evaluate the risk of recurrence and extension of Dupuytren's disease. J Hand Surg Br. 2004;29(5):427-30. doi: 10.1016/j.jhsb.2004.06.004

24. Hindocha S, Stanley JK, Watson S, Bayat A. Dupuytren's diathesis revisited: Evaluation of prognostic indicators for risk of disease recurrence. J Hand Surg Am. 2006;31(10):1626-34. doi: 10.1016/j.jhsa.2006.09.006

25. Werker P., Dias J., Eaton C., eds. Dupuytren disease and related diseases - The cutting edge. Springer. 2017:450. doi: 10.1007/978-3-319-32199-8

26. Li P, Li H, Ding S, Zhou J. NLR, PLR, LMR and MWR as diagnostic and prognostic markers for laryngeal carcinoma. Am J Transl Res. 2022;14(5):3017-3027.

27. Romano A, Laura Parrinello N, Cerchione C, et al. The NLR and LMR ratio in newly diagnosed MM patients treated upfront with novel agents. Blood Cancer J. 2017;7(12):649. doi: 10.1038/s41408-017-0019-6

28. Miyahara Y, Takashi S, Shimizu Y, Ohtsuka M. The prognostic impact of neutrophil-to-lymphocyte ratio (NLR) and lymphocyte-to-monocyte ratio (LMR) in patients with distal bile duct cancer. World J Surg Oncol. 2020;18(1):78. doi: 10.1186/s12957-020-01847-2

29. Huang Y, Liu Y, Mo G, et al. Inflammation Markers Have Important Value in Predicting Relapse in Patients with papillary thyroid carcinoma: A Long-Term Follow-Up Retrospective Study. Cancer Control. 2022;29:10732748221115236. doi: 10.1177/10732748221115236

30. Berghella AM, Contasta I, Del Beato T, Pellegrini P. The discovery of how gender influences age immunological mechanisms in health and disease, and the identification of ageing gender-specific biomarkers, could lead to specifically tailored treatment and ultimately improve therapeutic success rates. Immun Ageing. 2012;9(1):24. doi: 10.1186/1742-4933-9-24

31. Garcia Rojo E, García Gómez B, Santos-Pérez de la Blanca R, et al. Role of neutrophil-to-lymphocyte and platelet-to-lymphocyte ratios in Peyronie's disease: a new diagnostic approach to predict the stage of the disease? Asian J Androl. 2021;23(3):325-329. doi: 10.4103/aja.aja_74_20

32. Özbir S, Değirmentepe RB, Atalay HA, et al. The role of inflammatory parameters (neutrophil-to-lymphocyte ratio, platelet-to-lymphocyte ratio, and monocyte-to-eosinophil ratio) in patients with Peyronie's disease. Andrology. 2020;8(2):348-352. doi: 10.1111/andr.12702

33. Greenberg JW, Kim J, Pincus J, et al. Are neutrophil-lymphocyte and platelet-lymphocyte ratios useful for determining active phase of Peyronie’s disease? Journal of Clinical Urology. 2022;0(0). doi: 10.1177/20514158221094636

34. Eftimie G, Eftimie R. Quantitative predictive approaches for Dupuytren disease: a brief review and future perspectives. Math Biosci Eng. 2022;19(3):2876-2895. doi: 10.3934/mbe.2022132

35. Plander M, Salamon A, Toldy E, et al. Cellular immune response in Dupuytren’s disease. Biochemia Medica. 2008;18(2):193-200.