Сравнительный анализ результатов клинико-инструментальных исследований при использовании стандартной и модифицированной стромально-васкулярной фракции в лечении пациентов с хондромаляцией надколенника

Актуальность. Хондромаляция надколенника является одной из ведущих причин боли в переднем отделе коленного сустава и рассматривается как ранняя форма дегенеративного поражения пателлофеморального хряща. Ограниченный регенераторный потенциал гиалинового хряща и вариабельная эффективность консервативных методов лечения обусловливают поиск биологических технологий, способных оказывать структурно-модифицирующее воздействие. Перспективным направлением является применение аутологичной стромально-васкулярной фракции (SVF) жировой ткани, обладающей противовоспалительным и регенераторным потенциалом.

Цель работы — провести сравнительную оценку результатов клинико-инструментальных исследований при использовании стандартной и модифицированной технологий SVF-терапии в лечении пациентов с хондромаляцией надколенника.

Материалы и методы. Выполнено нерандомизированное ретроспективное многоцентровое когортное исследование, включавшее 41 пациента с хондромаляцией надколенника I–III степени по Outerbridge. Пациенты распределены на две группы: стандартная SVF (n = 20) и модифицированная SVF (n = 21). Оценку проводили до лечения и через один, шесть и 12 месяцев. Анализировали показатели ВАШ, KOOS-PS, а также количественные параметры дефекта хряща по данным МРТ (линейные размеры, площадь, объём). Различия считали статистически значимыми при уровне p < 0,05.

Результаты. В обеих группах через 12 месяцев отмечено достоверное снижение боли и улучшение функции (p < 0,001). В группе стандартной SVF площадь дефекта уменьшилась на 27,4 %, объём — на 44,6 %; в группе модифицированной SVF —на 40,2 % и 53,8 % соответственно (p < 0,001). Межгрупповое сравнение выявило более выраженное уменьшение ширины дефекта при модифицированной методике (p = 0,007). Через один месяц после лечения в группе модифицированной SVF зарегистрировано более выраженное снижение боли и улучшение функции (p < 0,01), тогда как в сроки шесть и 12 месяцев различия нивелировались.

Обсуждение. Модифицированная технология SVF-терапии обеспечивала более раннее снижение боли и улучшение функции по сравнению со стандартной методикой. В отдалённые сроки различия сглаживались, что подтверждает высокую эффективность SVF-терапии независимо от варианта протокола. Сопоставимые морфологические результаты по данным МРТ свидетельствуют о сохранении структурного эффекта при модификации технологии. Ограничениями исследования являются нерандомизированный дизайн и умеренный объём выборки.

Заключение. SVF-терапия демонстрирует выраженный клинический и структурно-положительный эффект при хондромаляции надколенника. Модифицированная технология обеспечивает более быстрое наступление клинического эффекта при сопоставимых отдалённых результатах морфологических изменений по данным МРТ, что позволяет рассматривать её как перспективный вариант оптимизации клеточной терапии.

1. Outerbridge RE. The etiology of chondromalacia patellae. J Bone Joint Surg Br. 1961;43-B:752–757. doi:10.1302/0301-620X.43B4.752.

2. Insall JN, Falvo KA, Wise DW. Chondromalacia patellae: a prospective study. J Bone Joint Surg Am. 1976;58(1):1-8.

3. Crossley KM, Stefanik JJ, Selfe J, et al. 2016 Patellofemoral pain consensus statement from the 4th International Patellofemoral Pain Research Retreat, Manchester. Part 1: Terminology, definitions, clinical examination, natural history, patellofemoral osteoarthritis and patient-reported outcome measures. Br J Sports Med. 2016;50(14):839-843. doi: 10.1136/bjsports-2016-096384.

4. Altukhova AV, Kaurkin SN, Skvortsov DV, et al. Changes in gait biomechanics as functional symptom of chondromalacia patella. Russian Open Med J. 2021;10(2):e0213. doi:10.15275/rusomj.2021.0213.

5. Fang T, Zhou X, Jin M, et al. Molecular mechanisms of mechanical load-induced osteoarthritis. Int Orthop. 2021;45(5):1125-1136. doi: 10.1007/s00264-021-04938-1.

6. Макушин В.Д., Чегуров О.К., Карасева Т.Ю., и др. Хондромаляция надколенника: современные концепции этиопатогенеза и лечения. Гений ортопедии. 1998;(4):92-96.

7. Farrokhi S, Keyak JH, Powers CM. Individuals with patellofemoral pain exhibit greater patellofemoral joint stress: a finite element analysis study. Osteoarthritis Cartilage. 2011;19(3):287-294. doi: 10.1016/j.joca.2010.12.001.

8. Thielen NGM, van der Kraan PM, van Caam APM. TGFβ/BMP Signaling Pathway in Cartilage Homeostasis. Cells. 2019;8(9):969. doi: 10.3390/cells8090969.

9. Han Z, Wang K, Ding S, Zhang M. Cross-talk of inflammation and cellular senescence: a new insight into the occurrence and progression of osteoarthritis. Bone Res. 2024;12(1):69. doi: 10.1038/s41413-024-00375-z.

10. Robinson WH, Lepus CM, Wang Q, et al. Low-grade inflammation as a key mediator of the pathogenesis of osteoarthritis. Nat Rev Rheumatol. 2016;12(10):580-592. doi: 10.1038/nrrheum.2016.136.

11. De Roover A, Escribano-Núñez A, Monteagudo S, Lories R. Fundamentals of osteoarthritis: Inflammatory mediators in osteoarthritis. Osteoarthritis Cartilage. 2023;31(10):1303-1311. doi: 10.1016/j.joca.2023.06.005.

12. Hunziker EB. Articular cartilage repair: basic science and clinical progress. A review of the current status and prospects. Osteoarthritis Cartilage. 2002;10(6):432-463. doi: 10.1053/joca.2002.0801.

13. Носков С.М., Маргазин В.А., Башкина А.С. и др. Почему лечебная физкультура является лучшим методом лечения остеоартрита коленных суставов? Пациентоориентированная медицина и фармация. 2024;2(3):21-28. doi: 10.37489/2949-1924-0055.

14. van der Heijden RA, Lankhorst NE, van Linschoten R, et al. Exercise for treating patellofemoral pain syndrome. Cochrane Database Syst Rev. 2015;1(1):CD010387. doi: 10.1002/14651858.CD010387.pub2.

15. Brittberg M. Clinical articular cartilage repair—an up to date review. Annals Joint. 2018;3:94. doi: 10.21037/aoj.2018.11.03.

16. Егиазарян К.А., Лазишвили Г.Д., Храменкова И.В. и др.. Алгоритм хирургического лечения больных с рассекающим остеохондритом коленного сустава. Вестник РГМУ. 2018;(2):77-83. doi: 10.24075/vrgmu.2018.020.

17. Айрапетов Г.А., Загородний Н.В., Воротников А.А. Экспериментальный метод замещения костно-хрящевых дефектов суставов (ранние результаты). Медицинский вестник Юга России. 2019;10(2):71-76. doi: 10.21886/2219-8075-2019-10-2-71-76.

18. Айрапетов Г.А., Воротников А.А., Коновалов Е.А. Методы хирургического лечения локальных дефектов гиалинового хряща крупных суставов (обзор литературы). Гений ортопедии. 2017;23(4):485-491. doi: 10.18019/1028-4427-2017-23-4-485-491.

19. Куляба Т.А., Банцер С.А., Трачук П.А. и др. Эффективность различных хирургических методик при лечении локальных повреждений хряща коленного сустава (обзор литературы). Травматология и ортопедия России. 2020;26(3):170-181. doi: 10.21823/2311-2905-2020-26-3-170-181.

20. Zuk PA, Zhu M, Mizuno H, et al. Multilineage cells from human adipose tissue: implications for cell-based therapies. Tissue Eng. 2001;7(2):211-228. doi: 10.1089/107632701300062859.

21. Gimble JM, Katz AJ, Bunnell BA. Adipose-derived stem cells for regenerative medicine. Circ Res. 2007;100(9):1249-1260. doi: 10.1161/01.RES.0000265074.83288.09.

22. Bourin P, Bunnell BA, Casteilla L, et al. Stromal cells from the adipose tissue-derived stromal vascular fraction and culture expanded adipose tissue-derived stromal/stem cells: a joint statement of the International Federation for Adipose Therapeutics and Science (IFATS) and the International Society for Cellular Therapy (ISCT). Cytotherapy. 2013;15(6):641-648. doi: 10.1016/j.jcyt.2013.02.006.

23. Yi T, Song SU. Immunomodulatory properties of mesenchymal stem cells and their therapeutic applications. Arch Pharm Res. 2012;35(2):213-221. doi: 10.1007/s12272-012-0202-z.

24. Zhou J, Wang Y, Liu Y, et al. Adipose derived mesenchymal stem cells alleviated osteoarthritis and chondrocyte apoptosis through autophagy inducing. J Cell Biochem. 2019;120(2):2198-2212. doi: 10.1002/jcb.27530.

25. Lee WS, Kim HJ, Kim KI, et al. Intra-Articular Injection of Autologous Adipose Tissue-Derived Mesenchymal Stem Cells for the Treatment of Knee Osteoarthritis: A Phase IIb, Randomized, Placebo-Controlled Clinical Trial. Stem Cells Transl Med. 2019;8(6):504-511. doi: 10.1002/sctm.18-0122.

26. Смышляев И.А., Гильфанов С.И., Копылов В.А. и др. Оценка безопасности и эффективности внутрисуставного введения стромально-васкулярной фракции жировой ткани для лечения гонартроза: промежуточные результаты клинического исследования. Травматология и ортопедия России. 2017;23(3):17-31. doi: 10.21823/2311-2905-2017-23-3-17-31.

27. Kim KI, Kim MS, Kim JH. Intra-articular Injection of Autologous Adipose-Derived Stem Cells or Stromal Vascular Fractions: Are They Effective for Patients With Knee Osteoarthritis? A Systematic Review With Meta-analysis of Randomized Controlled Trials. Am J Sports Med. 2023;51(3):837-848. doi: 10.1177/03635465211053893.

28. Vargel İ, Tuncel A, Baysal N, et al. Autologous Adipose-Derived Tissue Stromal Vascular Fraction (AD-tSVF) for Knee Osteoarthritis. Int J Mol Sci. 2022;23(21):13517. doi: 10.3390/ijms232113517.

29. Tang X, Huang H, Hao L. Decadal analysis of efficacy and safety profiles of mesenchymal stem cells from varied sources in knee osteoarthritis patients: A systematic review and network meta-analysis. Exp Gerontol. 2024;192:112460. doi: 10.1016/j.exger.2024.112460.

30. Голубинская П.А., Ручко Е.С., Пикина А.С. и др. Особенности тканеинженерных и клеточных препаратов, применяемых для терапии поражений хрящевой ткани. Гены и клетки. 2025;20(1):5-17. doi: 10.17816/gc640858.

31. Зверев Г.М., Судницын А.С., Яковлев С.В., Сайфулин А.В. Использование модифицированного протокола механического получения стромально-васкулярной фракции в сочетании с плазмой, обогащённой тромбоцитами, при остеохондральных дефектах коленного сустава. Гений ортопедии. 2026;32(3): 340-349. doi: 10.18019/1028-4427-2026-32-3340-349.

32. Yokota N, Hattori M, Ohtsuru T, et al. Comparative clinical outcomes after intra-articular injection with adipose-derived cultured stem cells or noncultured stromal vascular fraction for the treatment of knee osteoarthritis. Am J Sports Med. 2019;47(11):2577-2583. doi: 10.1177/0363546519864359.

33. Bisicchia S, Bernardi G, Pagnotta SM, Tudisco C. Micro-fragmented stromal-vascular fraction plus microfractures provides better clinical results than microfractures alone in symptomatic focal chondral lesions of the knee. Knee Surg Sports Traumatol Arthrosc. 2020;28(6):1876-1884. doi: 10.1007/s00167-019-05621-0.

34. Hudetz D, Borić I, Rod E, et al. The Effect of Intra-articular Injection of Autologous Microfragmented Fat Tissue on Proteoglycan Synthesis in Patients with Knee Osteoarthritis. Genes (Basel). 2017;8(10):270. doi: 10.3390/genes8100270.

35. Onoi Y, Hiranaka T, Nishida R, et al. Second-look arthroscopic findings of cartilage and meniscus repair after injection of adiposederived regenerative cells in knee osteoarthrits: Report of two cases. Regen Ther. 2019;11:212-216. doi: 10.1016/j.reth.2019.07.010.

36. Michalek J, Vrablikova A, Darinskas A, et al. Stromal vascular fraction cell therapy for osteoarthritis in elderly: Multicenter casecontrol study. J Clin Orthop Trauma. 2019;10(1):76-80. doi: 10.1016/j.jcot.2018.11.010.

37. Russo A, Condello V, Madonna V, et al. Autologous and micro-fragmented adipose tissue for the treatment of diffuse degenerative knee osteoarthritis. J Exp Orthop. 2017;4(1):33. doi: 10.1186/s40634-017-0108-2.